Помазков Ю.И., Заец В.Г. Биологическая защита растений - файл n1.doc

Помазков Ю.И., Заец В.Г. Биологическая защита растений
скачать (722 kb.)
Доступные файлы (1):
n1.doc722kb.07.11.2012 04:37скачать

n1.doc

1   2   3   4   5
Таблица 5

Некоторые виды нематод, поражающих членистоногих


Семейство

Вид

Вредитель

Steinermatidae

Neopalectana

Японский жук, стебле-



glaseri

вой мотылек (Ostrinia





nubilaris)



N.feltiae

Озимая совка,Яблонная



N.carpocapsae

плодожорка (Carpocap-





sa pomonella)

Diplogasteridae

Pristonchus

Жук (Spereda triden-



labiata

tata)



P.brevicauda

Стеблевой мотылек



P.uniformis

Колорадский жук (Lep-





tinotarsa decemlineata)

Allantonematidae

Allantonema

Жук (Hylobius abietis)



mirabile





Bradynema rigidum

Жук (Aphodius fimeta-





rius)



B.trixagi

Жук (Throscus dermes-





toides)



Howardula

Жук (Phyllotreta



phyllotretae

indulata)



Sticlylus

Жук (Ernobius abietis)



stammeri



Mermithidae

Mermis elegans

Lepidoptera spp.



Hexamermis brevis

Lepidoptera spp.





Diptera spp.





Coleoptera spp.



Megalomermis

Хрущи



mеlolonthae



Steinernematidae

Steinernema

Cephaleia abietis



kraussei





Neoaplectana

Яблонная плодожорка



carpocapsae




Нематоды используются в настоящее время и в качестве фитофагов. Так, для регуляции распространения карантинного сорняка горчака ползучего (розового) (Acroptilon repens) применяют горчаковую нематоду (Paranguina picridis). Фитофаг вводят в почву в виде водной суспензии инвазионных личинок, которую получают путем мацерации собранных с корней растений галл. Массу размятых галл равномерно раскладывают на сите и закрепляют в сосуде. Затем наливают воду выше уровня их. Через 4-6 часов водная суспензия, содержащая вышедших из тканей нематод, используется для внесения в почву опрыскиванием. В среднем из 100 г сухих галл в воду выходят около 8,5 млн инвазионных личинок. Количество зараженных растений достигает 60%.

Для массового получения инвазионных личинок уже используются искусственные питательные среды, например, для Neoaplectana sp. пептонную (1г пептона, 0,2г КН2РО4, 0,1г MgSO4, 5г декстрозы, 1,5г агар-агара, 100 мл дистиллированной Н2О) или яичную (35 г яичного порошка на 100 мл дистиллированной Н2О). Размножение нематод усиливается, если в чашку Петри после разлива и затвердевания пептонной среды, добавляют небольшой кусочек вареной свиной почки или печени.

Инвазионных личинок можно получать и заражая ими непосредственно гусениц Чешуекрылых в садках (начальная доза 50-500 особей на гусеницу. Выращивание нематод производится в темноте.

Личинки способны сохранять жизнеспособность до нескольких лет в 0,01% растворе формалина при 5-7С и периодической аэрации (1 раз в месяц) О2 в течение 30 сек.
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ В ЗАЩИТЕ
Использование биологически активных соединений является в настоящее время существенной и неотъемлемой частью любой интегрированной системы защиты растений. Уже получен целый ряд синтетических веществ, близких по действию природным, регулирующим различные функции роста, размножения и развития организмов (насекомых, членистоногих, нематод).

Различают 2 основные группы соединений: гормоны, участвующие в онтогенезе на уровне организма, и феромоны, управляющие состоянием популяций. Их применение осуществляется по следующим направлениям:

- наблюдение за состоянием популяций и сигнализация о сроках проведения защитных мероприятий;

- дезориентация самцов насыщением воздушного пространства феромоном с целью снижения активности спаривания, количество оплодотворенных яиц и, в конечном итоге, численности популяции вредного вида;

- феромонные ловушки с клеевым покрытием и инсектицидным или стерилизующим эффектом;

- ингибирование некоторых этапов морфогенеза.

Гормоны. Механизм действия синтетических веществ этого типа преимущественно связан либо с ингибированием синтеза хитина, либо проявляется как аналоги ювенильных гормонов. Применение созданных препаратов, уровень их биологической активности дифференцируется в зависимости от объекта. Так, против яблонной плодожорки их действие, прежде всего, определяется стерилизующей и овицидной активностью, тогда как против американской белой бабочки - ларвицидной. Причем гусеницы первого возраста у последней примерно в 1000 раз более чувствительны, поэтому меняется и доза препарата используемого для обработок насаждений (от 0,5 г/га до 200-500 г/га). Часто действие гормональных соединений сказывается и на последующих поколениях вредителей. Еще одним положительным моментом этой группы соединений является высокая эффективность против популяций, приобретших резистентность к фосфороорганическим и другим инсектицидам.

Против видов, устойчивых к ингибиторам синтеза хитина, применяют гормональные препараты, нарушаюшие нормальные процессы метаморфоза, - ювеноиды. Например, для защиты плодового сада от сетчатой листовертки рекомендуют эпофенонен (1,5 кг/га), щитовок, червецов и псиллид - гидропрен, метапрен и кинопрен. Показано, что препараты не оказывают отрицательного действия на полезные виды (энтомофаги, хищники). В месте с тем, для указанной группы соединений отмечается достаточно широкий набор восприимчивых объектов, например, для димелина, кинопрена и других.

Одновременно показано, что некоторые ювенильные гормоны оказывают стимулирующий эффект, ускоряя репродуктивное созревание и увеличивая продуктивность особей после обработки.

Иногда ювенильные гормоны используются в системе интегрированной защиты в качестве препаратов, заменяющих химические. Так, обработки алтозаром, удлиняя период питания личинок златоглазки обыкновенной (Chrysopa carnea) за счет угнетения ее эмбрионального развития способствуют, таким образом, большей эффективности ее против тлей.

Значительно большей селективностью обладают феромоны. Феромоны. Их роль как сигнальных вещестсв проявляется на уровне вида или группы видов, что сближает их по направленности действия с энтомофагами. С помощью уже полученных препаратов в США успешно подавляют численность многих видов вредителей, в частности плодовых культур и хлопчатника (восточная плодожорка, яблонная плодожорка, сетчатая листовертка, гроздевая и двулетняя листовертка). Используя половые феромоны для дезориентации самцов, удается обеспечивать биологическую эффективность, особенно при насыщении их смесью (125-140 мг/час/га) на уровне 92-98%.

Различают феромоны тревоги, половые, регулирующие коммуникацию особей противоположного пола, агрегационные, обеспечивающие скопление вида в местах, благоприятных для питания и размножения, и следовые, отмечающие пути следования к источнику пищи. Созданы и выявлены аттрактивные свойства у соединений для более чем 600 видов насекомых, в том числе 150 Чешуекрылых. Многие из них прошли полевые испытания. Вместе с тем, наиболее часто их применяют в феромонных ловушках с целью наблюдения за состоянием популяции конкретного вида. С их помощью получают более объективную информацию о начале и динамике миграции вредителей, что позволяет осуществлять сигнализацию сроков проведения защитных мероприятий.

Всесторонняя оценка биологической активности получаемых синтетических соединений позволила выделить вещества, обладающие аттрактивными свойствами. В частности, удалось установить их высокую эффективность для уничтожения с помощью ловушек самцов вьюнковой совки (Emmelis trabialis), яблонной плодожорки (Carpocarpsa pomonella), непарного шелкопряда (Lymantria dispar). Более того, доказано, что отдельные компоненты полового феромона сетчатой листовертки (Adoxopheges arana) способны привлекать самцов совки земляной каемчатой (Triphaena bumbria) и огневки опаленной. Отмечается и конкурентное действие.

Чувствительность и избирательность к феромонам у насекомых чрезвычайно высоки. Они способны реагировать на его источник на расстоянии до нескольких километров. Причем самцы дифференцируют феромоны с различным составом даже в пределах одной популяции. В США уже выделены 2 феромонные расы стеблевого мотылька.

Эти свойства позволяют использовать феромоны в ловушках различной конструкции для контроля за численностью и распространением вида на основе вылова и перейти к целенаправленному подавлению его популяции. Так, при попадании в ловушки самцов хлопковой совки, регистрирующих начало лета вредителя, через 5-7 дней поля обрабатывают инсектицидами или выпускают трихограмму. Более того, с помощью ловушек легко установить плотность популяции в конкретном регионе, поле и определить порог вредоносности вредителя, а это, в свою очередь, позволяет сократить число химических обработок, которые проводят только там, где численность вида превышает пороговую. В результате эффективность обработок резко возрастает, а кратность их снижается в 2 раза.

Особенно важно подчеркнуть, что при использовании феромонных ловушек прогнозируется появление вредителя до наступления у него вредящей стадии развития, что дает возможность своевременно планировать и проводить защитные мероприятия.

Ловушки целесообразно применять для выявления карантинных видов (восточная плодожорка, средиземноморская муха и др.). Особенно перспективным представляется использование феромонов для защиты продовольственных запасов растительного происхождения в процессе хранения. В частности, проведено испытание феромонной ловушки для подавления популяций южной и мельничной огневок (Волошко, 1991). Найдено, что при отлове от 50 до 75% самцов численность популяции южной огневки снижалась во втором поколении на 92%. Ловушки, содержащие 1 мг действующего вещества размещались в хранилище на высоте не менее 1,5 м. На 100-150 м2 устанавливалась одна ловушка.

Практике предложены феромонные ловушки разной конструкции (приложение 1 - 3,4,5), где в нижней их части закрепляется источник феромона (капсула, пенопласт и др.), а поверхность в целях фиксации привлеченных самцов покрыта невысыхающим клеем, например, пестификсом.

Как гормональные препараты, так и феромоны, могут применяться для непосредственной обработки природных популяций вредителей с целью нарушения популяционных связей и, в конечном итоге, снижения их численности и вредоносности. К положительным качествам биологических соединений относятся отсутствие отрицательного влияния на теплокровных и основные составляющие элементы биоценозов.

Таким образом, очевидно, что с их помощью, во-первых, удается значительно сократить число и объем химических обработок пестицидами полей и насаждений сельскохозяйственных культур, за счет большей объективности наблюдений за состоянием популяций вредных видов и определения оптимальных сроков борьбы с ними, и, во-вторых выявлять очаги карантинных объектов и вредителей запасов.
БИОПЕСТИЦИДЫ
Среди объектов, способных регулировать численность (плотность) популяций в биоценозах, активную роль играют сами растения, часто обладающие, как известно, бактерицидными и инсектицидными свойствами. Например, для защиты клубней картофеля от повреждений картофельной молью их гурты в Индии покрывают листьями Azardica indica, обладающей энтомоцидной активностью.

В настоящее время во многих странах проводится скриннинг различных их видов и поиск наиболее эффективных против вредных организмов из различных ботанических семейств.

Так, в Индии для защиты семян, в частности бобовых культур, от зерновок применяют различные растительные масла (кокосовое, горчичное, арахисовое, кунжутное и подсолнечное). В небольших концентрациях (0,1-0,3%) масляное покрытие предупреждало повреждение семян жуками, снижало их численность и плодовитость. Более того, под действием пальмового, сафлорного, кокосового, горчичного и арахисового масла резко падало отрождение личинок из отложенных яиц Callosobruchus maculatus, а продолжительность цикла развития, наоборот, возрастала. Наибольшая эффективность отмечена при применении 1% масляной эмульсии из нима, подавлявшей вылупляемость личинок из яиц на 80%.

Широким спектром действия характеризуется масло из азидирахты индийской. Его репеллентые и инсектицидные свойства отмечены в отношении таких вредителей как C.maculatus, C.chinensis, (при дозе 2 мл/кг семян), Schistoserca gregaria (8 мл/кг) и Spodoptera litura (0,4% концентрации эмульсии).

Кроме масел, инсектицидной способностью обладают также растительные порошки (дусты)(см.рис.2-2). Найдено, что дусты различных видов мяты (Mentha spicata, M.piperita, M.citrata) являются токсичными для жуков C.maculatus, самки которых значительно снижали число откладываемых яиц. ЛД50 порошков из кожуры апельсинов и грэйпфрутов против четырехпятнистой зерновки составляла соответственно 40 и 56 г/кг семян вигны.

В Индии широко применяется смешивание зерна риса с порошком из орехов нима для предохранения его от повреждений капровым жуком на складах. Кроме того, отмечается ингибирующее действие порошка на развитие Zonocerus variegatus и тлей Brevicorne brassicae, и репеллентное на Sitophilus orizae.

Настойчивые и целеустремленные поиски растений, обладающих биопестицидными свойствами, позволили выделить 11 видов, способных подавлять развитие рисового долгоносика, китайской зерновки и капрового жука (Мордкович и др.1989). В частности, были обнаружены пестицидное действие порошка из листьев клеродрона на капрового жука и рисового долгоносика, семян тмина (Carum roxbyrghianum) на указанные объекты при хранении зерна. Показана также высокая эффективность дуста из корневищ аира обыкновенного (Acerus calanus), дудника (Angelica silvestris), клеродендрона (Clerodendron inerne), элениума (Helenium aromaticum), Tephrosia vogelii и Chenopodium ambrosoides против вредителей запасов, в частности, арахисовой (Caryedon serratus) и фасолевой (Acanthoscelides obtectus) зерновок.

Высокую токсичность против различных вредителей проявляют экстракты из определенных органов растений. Так, вытяжки из семян азадирахты индийской при дозе 100 мл/кг вызывали 100%-ную гибель личинок колорадского жука (Leptiniоtarsa decemlineata), гусениц белянки (Pierris brassicae) и капустной совки (Mamestra brassicae), ингибировали развитие личинок саранчи (Locusta migratoria) и гусениц огневки (Ephestia kuniella).

Проявление их действия дифференцируется в зависимости от фазы развития вредителей. Так, испытания экстрактов из растений из нескольких семейств (Paraveraceae, Ericaceae, Convolvulaceae, Geraniceae, Plantaginaceae) показали, что позитивное влияние они оказывают только на личинок колорадского жука и, в значительно меньшей степени, на взрослых особей. Вероятно, это связано с меньшей избирательностью личиночных стадий при видовой приуроченности к питанию на представителях из семейства Пасленовых.

Под действием биопестицидов, в частности, экстрактов из тиса ягодного, наблюдаются нарушения линьки у личинок 4-го возраста, развития куколок и имаго фасолевого жука. Указанный эффект отмечался только при оральном поступлении соединений, биологически активный компонент которых идентифицирован как производное таксана.

С другой группой - лимоноидами - связывают влияние экстрактов из растений семейств Melliaceae и Rutaceae. Вытяжки из азадирахты индийской ингибировали питание и развитие гусениц Рeridoma sauca (при летальной дозе ЛД50 27*10-6%) и линьку саранчи (Melanopus sanguinipes). Соединения идентифицированы как цедролон, антотекол и буссеин. Первое из них подавляло также линьку у молочайного клопа.

Наблюдается положительная корелляция между концентрацией экстрактов и гибелью вредных видов. В не меньшей степени эффективность действия зависит от способа применения соединений. Так, сравнительная оценка экстрактов из семян лавра александрийского на гусениц 3-го возраста бабочки медведицы (Diacrisia obliqua) показала, что при контактном действии смертность их составляла 33-100%, тогда как при оральном введении - 2,7-80% соответственно.

Высокая пестицидная активность отмечается для спиртовых (гексаноловых и этаноловых) экстрактов, в частности, из растений семейства Малиевых, например, из семян азадирахты индийской (Azadirachta indica). Добавление их в питательную среду в дозе от 16 до 104 ррм вызывали 100% гибель гусениц совки (Spodoptera frugiperda), а в полевых условиях - капустной моли (Plutella maculipennis).

Показана перспективность использования растительных экстрактов с антифидантными свойствами также против Жесткокрылых и Равнокрылых. В последние годы только в Израиле выделено более 130 веществ разной химической природы (глюкозиды, ди-, три-, тетратерпеноиды, моно-, сексвитерпены, фенолы, гуаниды, стероиды, лигнины, кумарины и др.). Большинство из них относятся к группе алкалоидов, например, азадирахтин. Антифиданты способны блокировать центры, регулирующие питание вредных видов.

В ряде случаев отмечался более широкий спектр действия. Например, экстрактивные вещества из растений семейства Simaronlaceae обладали, кроме антифидантных свойств, антигельминтной, бактерицидной и амебоцидной активностью, проявляя также фитотоксичность.

Важно подчеркнуть, что виды растений с рассмотренными свойствами обнаруживаются в любых экосистемах и являются одним из механизмов естественной регуляции численности растительноядных организмов. Даже у многих сортов, например, бобовых культур (сои и фасоли), различающихся по повреждаемости, при сравнительном химическом анализе листьев выявляются вещества с репеллентным действием у устойчивых в отношении совок и мексиканского фасолевого жука (Epilachna sp.) и, наоборот, аттрактантным - у восприимчивых.
ГЕНЕТИЧЕСКИЕ ПРИЕМЫ БОРЬБЫ С НАСЕКОМЫМИ
Генетические методы относятся к основным элементам интегрированной системы защиты растений, в частности, выпуск стерилизованных особей в их природные популяции позволяет подавлять численность вида. В качестве примеров успешного применения метода отмечается его использование в борьбе с плодовыми мухами (средиземноморской, восточной, дынной, мексиканской, карибской, вишневой и др.). Так, замещение в природной популяции весенней капустной мухи фертильных самцов стерильными снизило численность вида в 5 раз. Норма выпуска составила 100 особей/га, что обеспечило соотношение самцов (облученных-стерильных:природных) 20:1, 25:1. В этом случае сохранялась активность спаривания, но число стерильных яиц, откладываемых самками, достигало 95%. Более того, зарегистрированы факты переноса стерилизующего эффекта от особи к особи внутри самой популяции при спаривании.

Стерилизация, которая представляет основу генетического метода борьбы, проводится двумя путями: либо искусственно с помощью ионизирующих излучений (рентгеновское или гамма-излучение) или химических веществ (хемостерилянтов), либо скрещиванием несовместимых особей популяции, дающих стерильных потомков. Интересно, что среди соединений, вызывающих стерильность, отмечаются гербициды типа триазина.

Стерильность самцов определяется подавлением развития спермы, ее подвижности или нарушениями в хромосомах при сохранении подвижности и способности к оплодотворению (доминантные летальные мутации). Для борьбы с полигамными видами наиболее эффективен последний тип стерилизации, против моногамных - все типы.

При оценке эффективности метода генетической защиты учитывается стерильность, возникающая после обработки, а также стерильность, появляющаяся у потомков. По расчетам ее действие в F1 проявляется более позитивно, чем при 100% первоначальной стерильности, т.к. обработка влияет на жизнеспособность особей и их конкурентность при поиске противоположного пола. Так, при облучении самцов совки дозой, вызывающей 50% стерильность, уже в первом поколении зарегистрирован 90% уровень половой стерильности.

Таким образом, генетический метод достаточно эффективен, безвреден для теплокровных, обладает селективным действием в отношении популяции конкретных видов, которые к тому же не способны приобретать к нему устойчивости. К недостаткам метода можно отнести значительные затраты на искусственное разведение видов, подвергаемых стерилизации. При этом для многих из них методы массового производства в лабораторных условиях еще не отработаны. Кроме того, подавление в природных условиях популяции одного вида не защищает культуру от других. Тем не менее, к настоящему времени успешно реализованы свыше 20 программ по подавлению популяций вредных видов насекомых.

Наиболее часто для лучевой стерилизации используются источники Со60 или Cs137 в гамма-установках. Важнейшим моментом в технологии обработки является определение дозы облучения, не вызывающей летальных мутаций. Обычно она колеблется в пределах 20-50 крад.

Подбор оптимальной дозы необходим и в случае применения для стерилизации химических соединений. Обработка ими природных популяций в местах скопления вида или в искусственных условиях особей, полученных в результате массового разведения, не должна вызывать побочных изменений в организме насекомых, сохраняющих нормальную половую активность. Это позволяет получать стерилизованных самцов с конкурентной способностью не ниже, чем в природных популяциях.

Выбор способа обработки хемостерилянтами зависит от препарата и стадии насекомых. Например, куколок чаще обрабатывают, погружая на определенное время в раствор хемостерилянта, личинок - выкармливая на синтетических средах с добавлением стерилизующих соединений, а поступление их в организм имаго обеспечивается путем непосредственного контакта с препаратом, нанесенным на стенки садка, через конечности и покровы тела.

Уже испытано несколько тысяч синтезированных веществ, обладающих указанными свойствами. Среди них наиболее широкое применение в практике получили тиотеф и бусульфан. В частности, в целях подавления популяции американской белой бабочки ее самцов обрабатывали 1% водным раствором тиотефа, против хлопкового коробочного долгоносика (Anthonomus grandis) с успехом использовали бусульфан. Важно подчеркнуть, что некоторые хемостерилянты, например, тиотеф, применяются в аттрактантных ловушках совместно с феромонами, что позволяет осуществлять стерилизацию самцов вредных видов непосредственно в природной популяции. К недостаткам многих хемостерилянтов следует отнести их токсичность и канцерогенность.

К одним из первых объектов, кроме мух (Ceratitis capitata, Dacus oleae, Rhagoletis cerasi и др.), которые подверглись лучевой стерилизации, можно отнести непарного шелкопряда (Lymantria dispar) и кукурузного мотылька (Ostrinia nubilalis). Установлено, что наилучшие результаты генетический метод дает при сочетании с другими приемами защиты, в частности, с целью снижения исходной численности популяции (химические обработки пестицидами, привлечение энтомопаразитов и др.). В этих случаях ущерб от вредителя, например, яблонной плодожорки (Carpocapsa pomonella) после выпуска стерильных особей (в соотношении 35:1) удается снизить до уровня 0,05%.
ЭНТОМОФАГИ*
В последние годы выполнен большой объем работы по систематике и экологии энтомофагов - паразитов и хищников различных вредителей сельскохозяйственных культур и леса. Обнаружены их виды, способные подавлять популяции вредителей как в отдельных очагах, так и по всему ареалу обитания (табл.6). Однако эффективность действия их представителей в естественных условиях зависит от самых разнообразных факторов, в том числе погодных. Например, активность хищного клеща фитосейулюса проявляется при относительной влажности воздуха не ниже 70% и температуре воздуха около 30оС. Причем он способен подавлять популяцию паутинного клеща при соотношении 1:80 - 1:100. Уже найдены способы поддержания оптимальной плотности для ряда энтомофагов и акарифагов, позволяющие регулировать численность вредных видов. В их числе выпуск значительного количества особей при сезонной колонизации и интродукции в новые регионы.

Представители энтомофагов и акарифагов зарегистрированы в 16 отрядах. Причем большинство среди них составляют хищники (см.рис.2-3,3,4). Виды, имеющие практическое значение, относятся к 8 отрядам (табл.7).

Известно около 140 случаев успешной акклиматизации полезных видов для борьбы с членистоногими. Однако разработка разведения наиболее эффективных из них остается основной и трудной задачей биологического метода, т.к. часто не удается создать оптимальных условий для их накопления в необходимых масштабах при искусственном разведении. Среди основных объектов, используемых в настоящее время для защиты растений можно назвать трихограмму, габрабракона, энкарзию, фитосейулюса и др.
Трихограмма
Трихограмма - мелкое насекомое (0,3-0,4 мм) из отряда Перепончатокрылых (Hymenoptera сем. Trichogrammatidae). Паразитирует на яйцах Чешуекрылых. В практических целях для защиты сельскохозяйственных культур в основном используются 4 вида трихограммы (Tr.evanescens, Tr.euрroctidis, Tr.cacocеciae, Tr.embryophagum). Следует отметить более высокую эффективность местных экологически адаптированных форм по сравнению с завозными, что делает их предпочтительными для применения. Имаго питается нектаром. Самки откладывают одиночные яйца в яйца многих видов, т.е. уничтожают вредителя уже в начальной фазе его развития. В крупные яйца Чешуекрылых (совки, плодожорки, белянки, листовертки и др.) самка может отложить по 2-4 яйца. Вылупляющаяся личинка питается содержимым яйца, где и окукливается, т.е. развитие энтомофага от личинки до имаго происходит в яйцах жертвы. Имаго перед вылетом прогрызает его оболочку. После спаривания вылетевшие самки приступают к новой кладке. Одна самка трихограммы способна заразить до 20-40 яиц вредителя. Кладка проходит в течение суток (и днем и ночью) при температуре выше 10С.

80% яиц откладывается в первые 2-3 часа после вылета. Для развития одного поколения энтомофага требуется 10-13 дней. За вегетационный период может развиваться от 3 до 14 поколений. Осенью при температуре ниже 10С имаго впадает в диапаузу. Зимует трихограмма в фазе личинки внутри яиц хозяина. После перезимовки обычно сохраняется незначительное число особей. Их гибель наступает и при несинхронном развитии хозяина и энтомофага, когда, например, кладка яиц у первого и вылет у второго сдвигаются на 2-4 недели. Для поддержания необходимой плотности энтомофага проводят сезонную колонизацию, т.е. периодические выпуски имаго.
Таблица 6

Некоторые виды энтомофагов


Энтомофаг

Вредитель

Encarsia formosa

Оранжерейная белокрылка



(Trialeurodes vaporariorum)

Serangium parcesetosum

Цитрусовая белокрылка



(Dialeurodes citri)

Amllyseius mekenziei

Трипс табачный



(Thrips tabaci)

Prospaltella perniciosi

Калифорнийская щитовка



(Quadraspidiotus perniciosus)

Coccophagus gurnei

Цитрусовый мучнистый червец



(Pseudococcus gahani)

Pseudaphycus malinus

Червец Kомстока



(Pseudococcus comstoki)

Aphelinus mali

Тля яблонная кровяная



(Eriosoma lanigerum)

Coccinella spp.

Тли, трипсы, паутинные клещи

Aphidoletes aphidimyza

Тли

Syrphus corollae

Тли

Chrysopa carnea

Более 100 видов насекомых и



клещей

Phytoseiulus persimilis

Паутинный клещ



(Tetranychus urticeae)


Биологические требования у разных видов трихограммы неодинаковы. Так, трихограмма обыкновенная (Tr.evanescens) ведет приземный образ жизни и распространяется на 15-30 м от места выпуска. В ее популяции самки составляют 75-90%. Трихограмма желтая (Tr.cacoecia) обладает лучшими летными качествами и разлетается на 50 м и более, и самок образуется 70-80%. Самая активная поисковая способность характерна для трихограммы бессамцовой (Tr.embryophagum), но имеющей весьма низкую плодовитость (в среднем самка откладывает 6-12 яиц).

В массовых количествах трихограмму получают на специальных биофабриках. Ее разводят на яйцах зерновой моли (Sitotroga cerealella) - амбарном вредителе зерновых культур. Для этого автоклавированное (при 1,2 атм. в течение 30 мин) или пропаренное зерно пшеницы, ржи, кукурузы, а чаще ячменя засыпают в поддоны слоем не более 5 см, доводят его до влажности 15-16% и заражают яйцами зерновой моли (100 г/ц). В целях профилактики от заплесневения при увлажнении в воду добавляют KMnO4 (1 г/10 л). После отрождения гусеницы через 3-4 дня внедряются в зерно. В этот период поддерживается температура 24оС и влажность воздуха 80%. В процессе развития гусениц зерно разогревается (иногда до 38С), поэтому его периодически перемешивают и охлаждают, сохраняя оптимальную влажность 15-16%. При начале отрождения бабочек (через 30-35 дней) влажность увеличивается до 16,5%, а влажность воздуха в камере - до 85-90%. Затем его пересыпают в специальные кассеты и размещают в боксах с тем же гидротермическим режимом. Вылетающие бабочки скапливаются в темных местах. Их собирают и переносят в сетчатые обтянутые плотной тканью стеллажи для кладки яиц. Яйца собирают и используют для размножения трихограммы (1 г яиц зерновой моли содержит 50 тыс.штук).

Сроки выпуска энтомофага устанавливаются по результатам наблюдений за развитием вредителей, против которых его применяют. Норма выпуска колеблется в зависимости от региона, защищаемой культуры, плотности популяции и вида вредителя (от 40 тыс до 200 тыс шт/га).

1   2   3   4   5


Учебный материал
© bib.convdocs.org
При копировании укажите ссылку.
обратиться к администрации